L’analyse commence par le prélèvement des échantillons sur le terrain ou en production. La flexibilité de notre gamme de sacs RollBag s’adapte à tout type de prise d’essai (crustacés, produits volumineux comme les laitues, poudres alimentaires...).
Échantillonnage du prélèvement pour une préparation en vue d’une analyse microbiologique. L’échantillon est placé dans son sac unique avec filtre (BagFilter Pipet & Roll) pour malaxeur évitant la contamination croisée. Le sac tient debout avec un BagOpen.
Peser l’échantillon avec le dilueur DiluFlow Elite 5 kg. Le dilueur DiluFlow ajoute automatiquement le diluant selon le facteur de dilution choisi avec une précision de ± 2 % en accord avec les normes.
L’échantillon est homogénéisé dans un BagMixer SW. Il n’y a pas de contact de l’échantillon avec le malaxeur évitant ainsi les contaminations croisées. Les bactéries sont extraites rapidement de l’échantillon sans être détruites et le filtre présent dans le sac permet d’éliminer les particules dans le filtrat.
Les échantillons homogénéisés sont fermés grâce au sticker de fermeture repositionnable du BagFilter Pipet & Roll. Ils sont ensuite stockés dans un BagRack Slide. La zone de pipetage, positionnée en partie basse du sac, permet un prélèvement facilité du filtrat. Ouvrez/fermez facilement l’accès pipette avec le sticker repositionnable.
Avec FlexiPump, la distribution en série des milieux de culture, géloses, diluants… est précise, rapide et stérile.
Placer l’échantillon filtré dans un godet. L’ensemenceur easySpiral Pro ensemence automatiquement l’échantillon sur une boite de Petri permettant d’avoir 4 logs de dilution sur cette boite.
Le logiciel dataLink collecte les données de l’ensemencement. Avec le pack dataLink, imprimez l’étiquette Datamatrix. Collez-la sur la tranche de la boite de Petri ensemencée et placez-la dans l’incubateur.
Une fois l’incubation terminée, le dénombrement automatique est réalisé avec la gamme des compteurs auto Scan. Scannez le code Datamatrix et le Scan se règle automatiquement pour le dénombrement. Cliquez sur « Compter » puis « Valider ». Les images et les résultats sont automatiquement enregistrés dans votre ordinateur pour assurer la traçabilité.
Du prélèvement de l’échantillon à l’analyse bactérienne, nous vous proposons une large gamme de produits pour toutes vos analyses (produits laitiers, viandes, produits de la mer, plats préparés... ) en contrôle qualité comme en R&D.
Le nombre d’organismes viables est un indicateur de l’état d’hygiène du produit agroalimentaire ; il est le témoin d’une éventuelle contamination croisée ou d’une biomasse importante. L’énumération donne le résultat de l’état bactériologique de l’environnement et des conditions de production.
Recherche de la présence d’un éventuel pathogène responsable d’infection (exemple TIAC) dans le produit afin de déterminer si il est sain à la consommation.
Différentes analyses microbiologiques d’un produit agroalimentaire avant sa mise sur la marché.
Prélever l’échantillon avec RollBag
Peser 25 g d’échantillon et diluer au 1/10 avec DiluFlow
Homogénéiser l’échantillon dans un BagMixer
Ensemencer les indicateurs qualité avec easySpiral
Dénombrer les colonies pour obtenir un résultat de conformité avec Scan
Prélever l’échantillon avec RollBag
Réaliser un pooling d’échantillons avec DiluFlow Elite 5 kg (avec option Jumbo kit) :
• 375 g dilué au 1/10
• 5 x 25 g dilué au 1/10
• 125 g dilué au 1/4
…
Homogénéiser l’échantillon dans un JumboMix
Ensemencer les indicateurs qualité et/ou pathogènes
Placer les boites de Petri en incubation dans un ScanStation
Dénombrer et/ou détecter les colonies pour obtenir un résultat de conformité avec ScanStation ou Scan
Micro-organismes | instaBag EPT | instaBag Fraser ½ | DiluFlow | BagMixer | easySpiral | Scan |
---|---|---|---|---|---|---|
Flore totale | N | – | N | N | N | N |
Flore lactique | N | – | N | N | N | N |
Pseudomonas | N | – | N | N | N | N |
Enterobacteries | N | – | N | N | N | N |
Coliformes | N | – | N | N | N | N |
E. coli ß - glucuronidase + | N | – | N | N | N | N |
Staphylocoques coagulase + | N | – | N | N | N | N |
Clostridium perfringens | N | – | N | N | – | N |
ARS à 46 °C | N | – | N | N | – | N |
Bacillus cereus | N | – | N | N | – | N |
Campylobacter | N | – | N | N | – | – |
Levures et moisissures | N | – | N | N | – | – |
Listeria monocytogenes | – | N | N | N | – | – |
Salmonella spp. | N | – | N | N | – | – |
MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS
Méthode horizontale pour le dénombrement des micro-organismes
MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS
Exigences générales et recommandations
MICROBIOLOGIE
Directives générales pour la préparation des dilutions en vue de l’examen microbiologique
MICROBIOLOGIE
Règles générales pour la préparation de la suspension mère et des dilutions décimales
MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des viandes et produits carnés
MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des produits de la pêche
MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation de produits variés
MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation du lait et des produits laitiers
MICROBIOLOGIE
Règles spécifiques pour la préparation des échantillons prélevés au stade de production primaire
MICROBIOLOGIE DES ALIMENTS, DES ALIMENTS POUR ANIMAUX ET DE L’EAU
Préparation, production, stockage et essais de performance des milieux de culture
BACTERIOLOGICAL ANALYTICAL MANUAL
Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de FlexiPump et provenant d’une bouteille de diluant de 2L (crépine au fond et bouteille remplie pour la calibration).
Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une bouteille de 2 litres de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la bouteille se vide.
Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de l‘appareil, et provenant d’une poche de diluant de 2 litres.
Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une poche de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la poche se vide.
Objectif : Vérifier la précision de distribution d’un volume de 50 mL avec une pompe péristaltique FlexiPump Pro, en ayant un temps de distribution de moins de 4/5 secondes.
Conclusion : La FlexiPump Pro est précise pour une distribution de 50 mL, dans les conditions exposées ci-dessus. À noter que dans ces conditions, chaque distribution a duré 2,7 sec.
Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du Scan 1200 en comparant le comptage manuel et le comptage automatique. Pour une comparaison optimale, les boites de Petri ont été ensemencées et incubées dans notre laboratoire R&D, en utilisant les méthodes standards pour reproduire les conditions normales d’un laboratoire. Le même technicien a compté ensuite les colonies avec un Scan 1200 et manuellement pour obtenir des résultats permettant d’évaluer la précision du Scan. Ce document contient également une étude concernant le temps d’analyse par boite et une estimation du temps passé par les laboratoires.
Conclusion : Les tests montrent de différentes manières (droite de régression, coefficient de corrélation, moyenne de la différence de valeur de Log, et norme ISO 7218:2007) que le Scan 1200 :
— Permet de compter plus rapidement (jusqu’à 80 % de gain de temps).
— Compte aussi bien qu’un autre utilisateur (relation forte entre les 2 méthodes avec une différence moyenne de 2,35 % par boite).
Le Scan 1200 est un excellent outil pour les laboratoires qui ont besoin de compter un grand nombre de boites avec précision et sans perdre de temps. Tous les résultats peuvent être sauvegardés dans des fichiers spécifiques (appelés sessions) qui contiennent toutes les photos des boites et les dénombrements, ce qui garantit la qualité de l’analyse et une traçabilité parfaite.
Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation 100 en comparant la méthode manuelle et la méthode automatique sur l’analyse alimentaire et du paiement du lait. Pour une comparaison optimale, 1238 échantillons alimentaires, en doublon, ont été effectués sur une multitude de micro-organismes selon les méthodes de références du laboratoire. Ce document contient aussi les courbes évolutives de la charge bactérienne en fonction du temps.
Conclusion : L’interprétation de ces courbes nous permet de remarquer l’évolution du nombre d’UFC jusqu’à 15h d’incubation. Par la suite, le nombre d’UFC reste constant. Ainsi, le comptage en temps réel pendant l’incubation nous permet de déterminer rapidement la présence d’une contamination par exemple et donc de définir des actions correctives avant la fin de l’incubation.
Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique sur l’analyse d’échantillons ensemencés sur milieux Symphony et TBX.
Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des différents microorganismes développés sur le milieu Symphony et TBX permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.
Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer la performance du ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique de cultures pures de Salmonella typhimurium et de Listeria monocytogenes.
Conclusion : La différence de la majorité des comptages n’excède pas la limite de 0,3 log d’UFC. Ces résultats ne présentent pas de différence significative. La lecture des "Time to Result" des Salmonella typhimurium et Listeria monocytogenes permet d’anticiper les résultats de comptage et donc de donner la possibilité à l’utilisateur de définir plus rapidement une action corrective.
Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation pour compter en temps réel les colonies sur membrane de filtration. Le dénombrement a été effectué avec des agents pathogènes d’origine hydrique connus pour être impliqués dans des infections associées aux soins de santé (IASS). Des suspensions bactériennes ont été filtrées à travers des membranes qui ont été ensuite déposées sur des boîtes de Petri. Les colonies ont été comptées manuellement et les résultats ont été comparés aux comptages automatiques effectués par ScanStation.
Conclusion : ScanStation montre de bonnes performances pour compter en temps réel les colonies sur les membranes de filtration. Pour les sept souches testées, les comptages automatiques et manuels sont similaires, lorsque la filtration des suspensions bactériennes est effectuée sur des membranes en polycarbonate blanc (sans grille). Pour obtenir de meilleurs comptages automatiques dans ce cas, la configuration lumineuse conseillée est le fond blanc (lumière venant du bas). Cette étude montre que les colonies bactériennes peuvent être efficacement dénombrées avec ScanStation.
Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique d’échantillons plaqués pour l’évaluation du comptage de la robustesse.
Conclusion : Les tests de robustesse de ScanStation ont montré des données reproductibles dans des conditions intra- et inter-machines.
Socopa
Industrie bovine et porcine
Charal
Industrie bovine et plats préparés
Agrosprint
Congélation de fruits et légumes frais
Nos produits sont également utilisés pour les analyses microbiologiques dans le domaine environnemental, pharmaceutique, cosmétique, la santé animale et les instituts publics.