1Prélever

1Prélever

L’analyse commence par le prélèvement des échantillons sur le terrain. La flexibilité de notre gamme de sacs RollBag s’adapte à tout type de prise d’essai (sols, déchets végétaux, eau de source...).

2Échantillonner

2Échantillonner

Échantillonnage du prélèvement pour une préparation en vue d’une analyse microbiologique. L’échantillon est placé dans son sac unique avec filtre (BagFilter P 3500 mL) pour malaxeur évitant la contamination croisée. Le sac tient debout avec un BagOpen.

3Diluer

3Diluer

Peser l’échantillon avec le dilueur DiluFlow Pro équipé d’un JumboKit. Le dilueur DiluFlow ajoute automatiquement le diluant selon le facteur de dilution choisi avec une précision de ± 2 % en accord avec les normes.

4Homogénéiser

4Homogénéiser

L’échantillon est homogénéisé dans un JumboMix W CC. Il n’y a pas de contact de l’échantillon avec le malaxeur évitant ainsi les contaminations croisées. Les bactéries sont extraites rapidement de l’échantillon sans être détruites et le filtre présent dans le sac permet d’éliminer les particules dans le filtrat.

5Organiser

5Organiser

Les échantillons homogénéisés sont ensuite stockés dans un BagRack Slide.

6Distribuer

6Distribuer

Avec FlexiPump, la distribution en série des milieux de culture, géloses, diluants… est précise, rapide et stérile.

7Ensemencer

7Ensemencer

Placer l’échantillon filtré dans un godet. L’ensemenceur easySpiral Dilute dilue et ensemence automatiquement l’échantillon sur une boite de Petri permettant d’avoir 4 logs de dilution sur cette boite. Le logiciel easySpiral collecte les données de l’ensemencement.

8Incuber et Compter

8Incuber et Compter

Le ScanStation est un incubateur intelligent permettant de maintenir une température optimale pour la croissance microbienne tout en analysant en temps réel le développement des colonies au vue d’un dénombrement. Ce suivi en temps réel de la cinétique de croissance permet un dénombrement plus précis et d’obtenir des résultats anticipés. De plus le ScanStation est certifié 21 CFR part 11 garantissant la protection des données et la traçabilité des résultats.

Types d’analyses

Les analyses de contrôle environnemental traitent des échantillons provenant des eaux de traitement, des eaux de surfaces, des boues d’épuration, des sols…

L’utilisation de nos produits permet d’améliorer la qualité et la fiabilité des analyses microbiologiques dans ce domaine.

  • Contrôle qualité

    Dénombrement dans les eaux de traitement, des eaux de surfaces, des boues d’épuration :

    • Flore totale
    • Escherichia coli
    • Coliformes totaux
    • Légionnella spp.

    Recherche des micro-organismes dans les échantillons du sol, de boue :

    • Pseudomonas spp.
    • Bacillus spp.
    • Anaérobie sulfito réducteur - Clostidium spp.
    • Coliformes totaux et thermotolérants
    • Escherichia coli multirésistant aux antibiotiques

    Recherche des microrganismes dans les échantillons de l’air :

    • Lecture des ensemencements par sédimentation
    • Lecture des ensemencements via collecteur d’air
  • Recherche & Développement
    • Traitement des hydrocarbures
    • Analyses de la multi-résistance aux antibiotiques
    • Étude de vieillissement/analyse des végétaux
    • Analyse physico-chimique de la terre/reliquats azotés

Exemple de protocole dans le secteur environnemental

Prélever l'échantillon dans un sac RollBag

Prélever l’échantillon avec RollBag

Diluer l'échantillon au 1/10e avec DiluFlow

Peser 10 à 25 g d’échantillon de sols et diluer au 1/10e avec DiluFlow

Homogénéiser l'échantillon avec le malaxeur BagMixer

Filtrer et homogénéiser l’échantillon dans un BagMixer pour un filtrat sans particules

Ensemencer avec easySpiral

Ensemencer l’inoculum pour la recherche de micro-organismes avec easySpiral

Incuber les boites de Petri avec ScanStation

Placer les boites de Petri en incubation dans un ScanStation

Obtenir un résultat de conformité avec ScanStation

Dénombrer les colonies avec ScanStation ou Scan en vue d’une identification

Ensemencer avec easySpiral

Inoculer en mode constant la souche à analyser avec easySpiral et poser les disques d’antibiotiques. Placer dans un incubateur

Interpréter les boites SIR avec Scan

Lire et interpréter les boites (SIR) suivant l’EUCAST, CASFM, CLSI... avec la gamme Scan automatique

Notes applicatives

  • Répétabilité de distribution de 9 mL d’une bouteille de 2 litres avec FlexiPump

    Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de FlexiPump et provenant d’une bouteille de diluant de 2L (crépine au fond et bouteille remplie pour la calibration).

    Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une bouteille de 2 litres de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la bouteille se vide.

  • FlexiPump : Répétabilité de distribution de 9 mL d’une poche de diluant

    Objectif : Évaluer la répétabilité d’un volume distribué consécutivement, après une calibration de l‘appareil, et provenant d’une poche de diluant de 2 litres.

    Conclusion : À la vue des résultats obtenus lors de ce test, nous pouvons conclure que la distribution de doses successives avec la FlexiPump, à partir d’une poche de diluant, montre une excellente répétabilité. Nous ne constatons pas de dérive du volume distribué au fur et à mesure que la poche se vide.

  • FlexiPump Pro : Test de distribution de 50 mL

    Objectif : Vérifier la précision de distribution d’un volume de 50 mL avec une pompe péristaltique FlexiPump Pro, en ayant un temps de distribution de moins de 4/5 secondes.

    Conclusion : La FlexiPump Pro est précise pour une distribution de 50 mL, dans les conditions exposées ci-dessus. À noter que dans ces conditions, chaque distribution a duré 2,7 sec.

  • easySpiral/easySpiral Pro : Études de validation
    1. Validation de l’ensemencement easySpiral/easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant.
      1. Objectif : Étudier la fiabilité de l’ensemencement de l’easySpiral/easySpiral Pro en mode exponentiel décroissant (dite technique d’ensemencement Spiral) en procédant à une étude comparative avec la technique de référence « ensemencement manuel en surface » (dite technique classique).
      2. Conclusion : Nos résultats montrent une forte corrélation (R2 ≥ 0,982) entre l’ensemencement en mode Spiral par l’easySpiral et la technique classique. Aussi la moyenne de la différence des logs UFC/mL entre les deux méthodes est 12 fois inférieure à l’écart maximal, donc non significatif.
    2. Efficacité du nettoyage de l’easySpiral/easySpiral Pro
      1. Objectif : Assurer un nettoyage du stylet de l’easySpiral/easySpiral Pro entre chaque série d’échantillon. Vérifier l’efficacité de la désinfection du stylet par ensemencement de diluant stérile.
      2. Conclusion : L’étude montre que pour les six souches bactériennes, le nettoyage en mode long ou en mode court permet une désinfection du stylet et évite les contaminations entre les échantillons. Trois produits désinfectants ont été testés : l’éthanol 70 %, la javel 1 % et une formulation à base de peroxyde d’hydrogène (3 %) + acide peracétique (0,08 %). D’autres formulations avec des concentrations légèrement différentes en H2O2 et APA peuvent être également efficaces.
  • Évaluation des performances du Scan 1200

    Objectif : Le but de cette étude est d’évaluer la performance du Scan 1200 en comparant le comptage manuel et le comptage automatique. Pour une comparaison optimale, les boites de Petri ont été ensemencées et incubées dans notre laboratoire R&D, en utilisant les méthodes standards pour reproduire les conditions normales d’un laboratoire. Le même technicien a compté ensuite les colonies avec un Scan 1200 et manuellement pour obtenir des résultats permettant d’évaluer la précision du Scan. Ce document contient également une étude concernant le temps d’analyse par boite et une estimation du temps passé par les laboratoires.

    Conclusion : Les tests montrent de différentes manières (droite de régression, coefficient de corrélation, moyenne de la différence de valeur de Log, et norme ISO 7218:2007) que le Scan 1200 :
    — Permet de compter plus rapidement (jusqu’à 80 % de gain de temps).
    — Compte aussi bien qu’un autre utilisateur (relation forte entre les 2 méthodes avec une différence moyenne de 2,35 % par boite).

    Le Scan 1200 est un excellent outil pour les laboratoires qui ont besoin de compter un grand nombre de boites avec précision et sans perdre de temps. Tous les résultats peuvent être sauvegardés dans des fichiers spécifiques (appelés sessions) qui contiennent toutes les photos des boites et les dénombrements, ce qui garantit la qualité de l’analyse et une traçabilité parfaite.

  • Dénombrement des agents pathogènes d’origine hydrique avec ScanStation

    Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation pour compter en temps réel les colonies sur membrane de filtration. Le dénombrement a été effectué avec des agents pathogènes d’origine hydrique qui ont été liés à des infections associées aux soins de santé (IASS). Des suspensions bactériennes ont été filtrées à travers des membranes qui ont été ensuite déposées sur des boîtes de Petri. Les colonies ont été comptées manuellement et les résultats ont été comparés aux comptages automatiques effectués par ScanStation.

    Conclusion : ScanStation montre de bonnes performances pour compter en temps réel les colonies sur les membranes de filtration. Pour les sept souches testées, les comptages automatiques et manuels sont similaires, lorsque la filtration des suspensions bactériennes est effectuée sur des membranes en polycarbonate blanc (sans grille). Pour obtenir de meilleurs comptages automatiques dans ce cas, la configuration lumineuse conseillée est le fond blanc (lumière venant du bas). Cette étude montre que les colonies bactériennes peuvent être efficacement dénombrées avec ScanStation.

  • Tests de robustesse sur ScanStation

    Objectif : L’objectif de cette étude est d’évaluer les performances de ScanStation (ISS) en comparant le dénombrement manuel et automatique d’échantillons plaqués pour l’évaluation du comptage de la robustesse.

    Conclusion : Les tests de robustesse de ScanStation ont montré des données reproductibles dans des conditions intra- et inter-machines.

Ils nous font confiance

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CERALIM
Laboratoire indépendant
(membre du Réseau France Labo)

Jusqu’à trois fois moins grâce à la technique Spiral

Les différents secteurs d’activités

Nos produits sont également utilisés pour des analyses microbiologiques dans l’industrie agroalimentaire, l’environnement, la cosmétique, la santé animale et les instituts publics.